Особенности влияния экстрактов лишайников и лихенофильных грибов на рост in vitro клинически значимых микроорганизмов

Обложка

Цитировать

Полный текст

Открытый доступ Открытый доступ
Доступ закрыт Доступ предоставлен
Доступ закрыт Только для подписчиков

Аннотация

Исследована активность этанольных экстрактов лишайников (ЭЛ) и культур лихенофильных (эндобионтных) грибов лишайников (ЭГЛ), а также их этанольных экстрактов в отношении тест-культур Escherichia coli, Salmonella typhimurium, Pseudomonas fluorescens, Staphylococcus aureus, Micrococcus luteus, Enterococcus faecium, Paenibacillus sp., Candida parapsilosis. Выявлена избирательная активность ЭЛ и ЭГЛ в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий, а также дрожжей. Большая часть экстрактов лишайников и культур грибов не были активны в отношении грамотрицательных бактерий. Экстракты Cladonia rangiferina были неактивны в отношении всех тестируемых культур. Выявлен и подтвержден ранее описанный эффект локуса на активность метаболитов одного вида лишайников. Методом агаровых блоков выявлена избирательная активность 23 из 61 проанализированного штамма грибов в отношении грамположительных и грамотрицательных бактерий, 8 – в отношении дрожжей. Этанольные экстракты шести культур были способны угнетать рост St. aureus, M. luteus, Paenibacillus sp. и E. coli. Штамм NM10F28209 из лишайника Stereocaulon paschale проявлял наибольшую ингибирующую активность в отношении Ca. parapsilosis и Y. lipolytica и выбран для приоритетной разработки фунгицидного препарата.

Об авторах

Т. А. Панкратов

Институт микробиологии им. С.Н. Виноградского, Федеральный исследовательский центр
“Фундаментальные основы биотехнологии” РАН

Автор, ответственный за переписку.
Email: tpankratov@gmail.com
Россия, 119071, Москва

Р. Е. Щербатов

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА
имени К.И. Скрябина

Email: tpankratov@gmail.com
Россия, 109472, Москва

А. А. Дельцов

Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА
имени К.И. Скрябина

Email: tpankratov@gmail.com
Россия, 109472, Москва

Список литературы

  1. Демьянкова М.В., Садыкова В.С., Глухова А.А., Ефименко Т.А., Бойкова Ю.В., Малкина Н.Д., Кормилицина В.Г., Шарапченко С.О., Сумарукова И.Г., Васильева Б.Ф., Иванкова Т.Д., Терехова Л.П., Габриелян Н.И., Ефременкова О.В. Подход к поиску продуцентов антибиотиков, преодолевающих лекарственную устойчивость микроорганизмов // Антибиотики и химиотерапия. 2021. Т. 66. № 7–8. С. 4–12.https://doi.org/10.37489/0235-2990-2021-66-7-8-4-12
  2. Егоров Н.С. Микробы антагонисты и биологические методы определения антибиотической активности. М.: Высшая школа, 1965. 212 с.
  3. Ершова Е.Ю., Тихонова О.В., Лурье Л.М., Ефременкова О.В., Комзолкина О.В., Дудник Ю.В. Антимикробная активность штаммов Laetiporus sulphurеus в условиях глубинного культивирования // Антибиотики и химиотерапия. 2003. Т. 48. № 1. С. 18–22.
  4. Ефименко Т.А., Ефременкова О.В., Сумароукова И.Г., Васильева Б.Ф., Демкина Е.В., Эль-Регистан Г.И., Петрова М.А. Бактерии, выделенные из вечной мерзлоты Антарктики – эффективные продуценты антибиотиков // Микробиология. 2018. Т. 87. С. 573‒580.https://doi.org/10.1134/S0026365618050087
  5. Efimenko T.A., Efremenkova O.V., Sumarukova I.G., Vasilyeva B.F., Demkina E.V., El’-Registan G.I., Petrova M.A. Bacteria isolated from Antarctic permafrost are efficient antibiotic producers // Microbiology (Moscow). 2018. V. 87 P. 692–698.https://doi.org/10.1134/S0026261718050089
  6. Качалкин А.В., Глушакова А.М., Панкратов Т.А. Дрожжевое население лишайников полуострова Киндо // Микробиология. 2017. Т. 86. С. 762‒769.https://doi.org/10.7868/S0026365617060076
  7. Kachalkin A.V., Glushakova A.M., Pankratov T.A. Yeast population of the Kindo peninsula lichens // Microbiology (Moscow). 2017. T. 86. C. 786–792. https://doi.org/10.1134/S0026261717060078
  8. Корчиков Е.С., Зеленская Е.А., Халикова Л.В., Турченко П.С. Влияние экологических условий на накопление вторичных метаболитов лишайников рода Cladonia и семейства Parmeliaceae // Самарский научный вестник. 2021. Т. 10. № 3. С. 58–63.https://doi.org/10.17816/snv2021103108
  9. Определитель лишайников России. Вып. 6. Алекториевые, Пармелиевые, Стереокаулоновые. СПб., 1996. 203 с.
  10. Цуриков А.Г., Корчиков Е.С. Определитель лишайников Самарской области. Ч. 1. Листоватые, кустистые и слизистые виды: учеб. пособие. Самара: Изд-во Самарского ун-та, 2018. 128 с.
  11. Antimicrobial Resistance Collaborators. Global burden of bacterial antimicrobial resistance in 2019: a systematic analysis // Lancet. 2022. V. 399 (10325). P. 629‒655.https://doi.org/10.1016/S0140-6736(21)02724-0
  12. Huneck S., Yoshimura I. Identification of lichen substances. Berlin, Heidelberg: Springer, 2012. 493 p.
  13. Kosanić M., Ristić S., Stanojković T., Manojlović N., Ranković B. Extracts of five Cladonia lichens as sources of biologically active compounds // Farmacia. 2018. V. 66. P. 644–651.https://doi.org/10.31925/farmacia.2018.4.13
  14. de Kraker M.E., Stewardson A.J., Harbarth S. Will 10 million people die a year due to antimicrobial resistance by 2050? // PLoS Med. 2016. V. 13. Art. e1002184.https://doi.org/10.1371/journal.pmed.1002184
  15. Molnára K., Farkas E. Current results on biological activities of lichen secondary metabolites: a review // Z. Naturforsch. C J. Biosci. 2010. V. 65. P. 157–173.https://doi.org/10.1515/znc-2010-3-401
  16. Nikolaev Y.A., Tutel’yan A.V., Loiko N.G., Buck J., Sidorenko S.V., Lazareva I., Gostev V., Manzen’yuk O.Y., Shemyakin I.G., Abramovich R.A., Huwyler J., El’-Registan G.I. The use of 4-hexylresorcinol as antibiotic adjuvant // PLoS One. 2020. V. 15. Art. e0239147.https://doi.org/10.1371/journal.pone.0239147
  17. Noh H.-J., Lee Y.M., Park C.H., Lee H.K., Cho J.-C., Hong S.G. Microbiome in Cladonia squamosa is vertically stratified according to microclimatic conditions // Front. Microbiol. 2020. V. 11. Art. 268.https://doi.org/10.3389/fmicb.2020.00268
  18. Noh J.-I., Mun S.-K., Lim E.H., Kim H., Chang D.-J., Hur J.-S., Yee S.-T. Induction of apoptosis in MDA-MB-231 cells treated with the methanol extract of lichen Physconia hokkaidensis // J. Fungi. 2021a. V. 7. Art. 188.https://doi.org/10.3390/jof7030188
  19. Noh H.-J., Park Y., Hong S.G., Lee Y.M. Diversity and physiological characteristics of Antarctic lichens-associated bacteria // Microorganisms. 2021b. V. 9. Art. 607. Doi: https://doi.org/10.3390/microorganisms9030607
  20. Oh J.M., Kim Y.J., Gang H.S., Han J., Ha H.H., Kim H. Antimicrobial activity of divaricatic acid isolated from the lichen Evernia mesomorpha against methicillin-resistant Staphylococcus aureus // Molecules. 2018. V. 23. Art. 3068. https://doi.org/10.3390/molecules23123068
  21. Silva D.P.D., Cardoso M.S., Macedo A.J. Endophytic fungi as a source of antibacterial compounds – a focus on gram-negative bacteria // Antibiotics. 2022. V. 11. Art. 1509.https://doi.org/10.3390/antibiotics11111509
  22. Shrestha G., Raphael J., Leavitt S.D., Clair L.L.St. In vitro evaluation of the antibacterial activity of extracts from 34 species of North American lichens // Pharm. Biol. 2014. V. 52. P. 1262‒1266.https://doi.org/10.3109/13880209.2014.889175
  23. Xu M., Heidmarsson S., Olafsdottir E.S., Buonfiglio R., Kogej T., Omarsdottir S. Secondary metabolites from cetrarioid lichens: chemotaxonomy, biological activities and pharmaceutical potential // Phytomedicine. 2016. V. 23. P. 441–459.https://doi.org/10.1016/j.phymed.2016.02.012

Дополнительные файлы

Доп. файлы
Действие
1. JATS XML
Скачать

© Т.А. Панкратов, Р.Е. Щербатов, А.А. Дельцов, 2023