Влияние криоконсервации и молекулярного водорода на ультраструктуру сперматозоидов быков
- Авторы: Иващенко М.Н.1,2, Дерюгина А.В.1, Латушко М.И.3, Белов А.А.1,2, Игнатьев П.С.3, Ковылин Р.С.4, Ерзутов А.И.2
-
Учреждения:
- ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»
- ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет»
- Производственное объединение «Уральский оптико-механический завод имени Э.С. Яламова»
- ФГБУН «Институт металлоорганической химии имени Г.А. Разуваева РАН»
- Выпуск: № 3 (2024)
- Страницы: 81-84
- Раздел: Зоотехния
- URL: https://jdigitaldiagnostics.com/2500-2082/article/view/659331
- DOI: https://doi.org/10.31857/S2500208224030188
- EDN: https://elibrary.ru/yvyosp
- ID: 659331
Цитировать
Полный текст
Аннотация
В статье представлены результаты исследований влияния молекулярного водорода на ультраструктуры сперматозоидов крупного рогатого скота при криоконсервации. Объект изучения – спермопродукция черно-пестрых голштинизированных быков. Сперму разбавляли стерильной средой BioXcell (Франция). Для изучения действия молекулярного водорода на сперматозоиды использовали BioXcell, разведенную водородной водой. Исследовали нативную сперму, разбавленную BioXcell, сперму после глубокой заморозки, а также сперму после глубокой заморозки, предварительно обработанную молекулярным водородом. После криоконсервации количество клеток с аномалией структуры головки увеличено, хроматин недостаточно конденсированный, повышено содержание сперматозоидов с измененным положением акросомы, изменена ультраструктура аксонемы, отмечена нерегулярная укладка митохондрий. Использование молекулярного водорода в качестве криопротектора способствовало росту числа сперматозоидов с интактными головками, имеющими нормальные акросомы, форму и хроматин ядра. Полученные результаты свидетельствуют о положительном влиянии молекулярного водорода на морфологические показатели сперматозоидов крупного рогатого скота.
Ключевые слова
Полный текст
Интенсивное использование высокоценных быков-производителей в молочном скотоводстве – важное условие улучшения продуктивности. [4]
Основной метод для сохранения генетического разнообразия и технологии повышения репродуктивного статуса – метод криоконсервации спермы, позволяющий создавать банки спермы, в течение долгого времени сохранять генетический материал для селекции и транспортировать его на большие расстояния. [1]
Главная проблема при криоконсервации спермы – ее качество после оттаивания. В процессе замораживания-оттаивания примерно 50% сперматозоидов погибает. [11]
Глубокое замораживание отрицательно влияет на структуру мембран сперматозоидов, нарушается метаболизм, осмотический баланс клеток, активируются свободнорадикальные процессы. Избыточная выработка активных форм кислорода изменяет физико-химические свойства сперматозоидов, повреждает их ДНК, что приводит к снижению фертильности. Эндогенных антиоксидантов, присутствующих в сперматозоидах крупного рогатого скота, недостаточно для обеспечения целостности клеток после окислительного стресса при криоконсервации. Для повышения жизнеспособности сперматозоидов после размораживания необходимы добавки антиоксидантов. [14]
Молекулярный водород – антиоксидант с широким спектром действия. Он избирательно нейтрализует агрессивные высокотоксичные ОН и ONOO− и не нарушает функционирование сигнальных активных форм кислорода. Это выделяет молекулярный водород из общего количества антиоксидантов, которые не обладают таким действием в отношении свободных радикалов. Таким образом, молекулярный водород может уменьшать окислительный стресс и корректировать окислительно-восстановительный статус клеток. [5, 6, 12]
Обычно сперму изучают с помощью световой микроскопии, что не позволяет выявить значительную часть ультраструктурных повреждений в сперматозоидах. Наиболее точный метод ультраструктурного анализа для оценки функционального состояния сперматозоидов – метод электронной микроскопии. [10, 13]
Совершенствование протоколов криоконсервации спермы помогло бы преодолеть множество проблем, связанных со снижением качества размороженной спермы. [2]
Цель работы – оценка влияния молекулярного водорода на функциональный статус сперматозоидов быков после криоконсервации с помощью электронной микроскопии.
МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ
Исследования проводили in vitro в лаборатории ООО «Нижегородское» по племенной работе, Кстовского муниципального района Нижегородской области.
Объект изучения – спермопродукция черно-пестрых голштинизированных быков. Были взяты эякуляты трехлетних быков. Использовали свежеполученное семя с подвижностью сперматозоидов более 7 баллов и минимальным количеством аномальных форм клеток. [3]
Сперму разбавляли стерильной средой BioXcell (Франция). Влияние молекулярного водорода на сперматозоиды изучали путем разведения стерильной среды BioXcell водородной водой. Затем проводили итоговое разбавление, фасовку и эквилибрацию (экспозиция при 4°С в течение 3…4 ч). Замораживали в открытых гранулах. Доза одной открытой гранулы соответствует ГОСТ 26030-2015 и равна 0,2 мл. Сперматозоиды замораживали в течение 7,5 мин. до минус 145°С, затем контейнер с образцами помещали в жидкий азот (минус 196°С).
Эякулят фиксировали раствором глутарового альдегида (2,5%) и осмиевой кислотой (1%), заливали в эпоксидную смолу. Ультратонкие срезы получали на ультрамикротоме Reichert III и просматривали в микроскопе Hitachi SU8220 (Япония).
При электронно-микроскопическом исследовании сперматозоидов анализировали процентное содержание интактных головок, форму ядра, состояние хроматина, положение акросомы, морфологию аксонемы жгутика, ультраструктуру митохондрий.
Для насыщения воды молекулярным водородом использовали герметический бокс, в котором давление водорода повышали до 4 атм. в течение нескольких часов. Затем пакет выдерживали при атмосферном давлении в замкнутом объеме для того, чтобы избежать выделения водорода в виде микропузырьков и его обратной диффузии через стенки пакета. Концентрация молекулярного водорода в растворе находилась в пределах 1,2…1,5 мг/л.
Исследовали нативную сперму, разбавленную BioXcell (группа I), сперму после глубокой заморозки (II), а также сперму после глубокой заморозки, предварительно обработанную молекулярным водородом (III).
Полученные данные анализировали с помощью программы Microsoft Excel. Обработку результатов проводили по параметрическому t-критерию Стьюдента.
РЕЗУЛЬТАТЫ
Электронно-микроскопическое исследование нативных сперматозоидов показало, что клетки имели гладкую овальную конфигурацию с выраженной акросомой, занимающей 2/3 передней поверхности головки (см. таблицу). Содержимое акросомы – компактное. Отмечено отсутствие цитоплазматических капелек, дефектов шейки, хвоста. Митохондрии сферической или нитевидной формы. Хроматин представлял собой гомогенную гиалиноподобную массу.
Влияние криоконсервации и молекулярного водорода на ультраструктуру сперматозоидов быков
Морфологический признак | Нативные сперматозоиды (группа I) | Сперматозоиды после криоконсервации (группа II) | Сперматозоиды после воздействия молекулярным водородом и криоконсервации (группа III) |
Интактная головка | 78,85 ±4,67 | 58,57 ±6,18 * | 69,85 ± 5,61 ∆ |
Нормальная форма ядра | 95,57 ±2,29 | 94,85 ±2,67 | 94,57 ± 2,63 |
Нормальное состояние хроматина | 94,74 ± 4,06 | 85,21 ± 4,39 * | 90,53 ± 4,27 |
Нормальная форма митохондрий | 95,63 ± 3,17 | 76,43 ± 4,23 * | 84,53 ± 3,43*, ∆ |
Нормальное строение аксонемы | 85,36 ± 5,24 | 73,42 ± 4,31 * | 80,22 ± 5,65 |
Присутствие акросомы | 99,57 ± 4,53 | 89,57 ± 5,13 * | 94,23 ± 4,48 |
Нормальное положение акросомы | 97,32 ± 3,41 | 91,24 ± 2,39 * | 94,54 ± 3,25 |
Нормальная форма акросомы | 90,24 ± 2,24 | 81,36 ± 2,19 * | 86,44 ± 3,12 |
Компактное содержимое акросомы | 85,33 ± 3,37 | 74,32 ± 3,37 | 75,44 ± 3,23 |
Примечание. среднее ± SEM, * – статистически значимые различия по отношению к группе I, р≤0,05; ∆ – статистически значимые различия между группами после криоконсервации (группа II и III), р≤0,05.
После криоконсервации наблюдали рост числа клеток с аномалией структуры головки, увеличение количества сперматозоидов с цитоплазматическими капельками. Хроматин был недостаточно конденсированный, содержал фибриллы. Известно, что незрелый хроматин менее устойчив к денатурации. [9] Было повышено содержание сперматозоидов с измененным положением акросомы, у 8,43% клеток отмечена деградация акросомы, в результате преждевременно произошедшей акросомной реакции, у 18,64% сперматозоидов изменена ее форма. Эти изменения ассоциированы с нарушением подвижности. Для осуществления пенетрации сперматозоидом оболочек ооцита необходима интактная акросома, поэтому сведения об ультраструктуре головки и акросомы, а также способы коррекции возникших нарушений, играют важную роль в прогнозировании успешного оплодотворения. [8] Показано, что преждевременная акросомная реакция сперматозоида происходит при повышенном содержании в клетках активных форм кислорода. [7]
Жгутик обеспечивает подвижность сперматозоидов, морфологическая основа активности жгутиков – аксонема. Митохондрии расположены по спирали вокруг аксонемы и передают сперматозоидам энергию. При анализе структуры жгутиков после криоконсервации отмечено, что морфологические изменения затрагивают ультраструктуру аксонемы (нерегулярная укладка митохондрий). Воздействие криоконсервации на ядро сперматозоидов было минимальным.
Добавление молекулярного водорода в среду для разбавления спермы и последующая заморозка не оказали значительного влияния на морфологию клеток после оттаивания. Использование молекулярного водорода в качестве криопротектора способствовало увеличению количества сперматозоидов с интактными головками, имеющими нормальные акросомы, форму и хроматин ядра.
Положительное влияние молекулярного водорода на морфологические признаки сперматозоидов возможно обусловлено его антиоксидантным действием. [8, 10, 11] Известно, что в процессе криоконсервации в сперматозоидах происходит накопление активных форм кислорода, что приводит к повреждению ДНК, белков, липидов, изменению морфологии клетки. [4, 5] Сперматозоиды особенно восприимчивы к повреждению, вызванному окислительным стрессом, поскольку их плазматические мембраны содержат большое количество полиненасыщенных жирных кислот, а цитоплазма – низкие концентрации антиоксидантов. [15]
Таким образом, молекулярный водород можно использовать при криоконсервации спермы, чтобы избежать или минимизировать повреждения сперматозоидов и сохранить целостность спермы. Необходимы дальнейшие исследования в этой области.
Об авторах
Марина Николаевна Иващенко
ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»; ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет»
Автор, ответственный за переписку.
Email: kafedra2577@mail.ru
кандидат биологических наук
Россия, г. Нижний Новгород; г. Нижний Новгород
Анна Вячеславовна Дерюгина
ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»
Email: kafedra2577@mail.ru
доктор биологических наук
Россия, г. Нижний НовгородМихаил Иванович Латушко
Производственное объединение «Уральский оптико-механический завод имени Э.С. Яламова»
Email: kafedra2577@mail.ru
кандидат технических наук
Россия, г. ЕкатеринбургАндрей Александрович Белов
ФГАОУ ВО «Национальный исследовательский Нижегородский государственный университет имени Н.И. Лобачевского»; ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет»
Email: kafedra2577@mail.ru
кандидат биологических наук
Россия, г. Нижний Новгород; г. Нижний НовгородПавел Сергеевич Игнатьев
Производственное объединение «Уральский оптико-механический завод имени Э.С. Яламова»
Email: kafedra2577@mail.ru
кандидат физико-математических наук
Россия, г. ЕкатеринбургРоман Сергеевич Ковылин
ФГБУН «Институт металлоорганической химии имени Г.А. Разуваева РАН»
Email: kafedra2577@mail.ru
кандидат химических наук
Россия, г. Нижний НовгородАлексей Иванович Ерзутов
ФГБОУ ВО «Нижегородский государственный агротехнологический университет»
Email: kafedra2577@mail.ru
аспирант
Россия, г. Нижний НовгородСписок литературы
- Атрощенко М.М., Калашников В.В., Брагина Е.Е., Зайцев А.М. Сравнительное изучение ультраструктуры сперматозоидов в эпидидимальной, эякулированной и криоконсервированной сперме жеребцов // Сельскохозяйственная биология. 2017. Т. 52, № 2. С. 274–281. doi: 10.15389/agrobiology.2017.2.274rus
- Дерюгина А.В., Иващенко М.Н., Лодяной М.С. Оценка резистентности мембран сперматозоидов быков в процессе долгосрочного хранения // Естественные и технические науки. 2022. Т. 1 (164). С. 107–109.
- Национальная технология замораживания и использования спермы племенных быков-производителей / под ред. А.И. Абилова, Н.М. Решетниковой. М.: 2008. 160 с.
- Никиткина Е.В., Шапиев И.Ш. Использование спермы быков с низкой концентрацией и активностью сперматозоидов для криоконсервации // Достижения науки и техники АПК 2010. № 7. С. 49–51.
- Рахманин Ю.А., Егорова Н.А., Михайлова Р.И. Молекулярный водород: биологическое действие, возможности применения в здравоохранении (обзор) // Гигиена и санитария. 2019. Т. 98. № 4. С. 359–365.
- Artamonov M.Y., Martusevich A.K., Pyatakovich F.A. et al. Molecular Hydrogen: From Molecular Effects to Stem Cells Management and Tissue Regeneration // Antioxidants. 2023. Vol. 12. № 3. P. 636. https://doi.org/10.3390/antiox12030636.
- Coetzee K., Ozgur K., Berkkanoglu M. et al. Reliable single sperm cryopreservation in Cell Sleepers for azoospermia management // Andrologia. 2016. № 48. Р. 203–210. doi: 10.1111/and.12434.
- Endo Y., Fujii Y., Shintani K. et al. Simple vitrification for small numbers of human spermatozoa // Reprod Biomed Online. 2012. № 24. Р. 301–307. doi: 10.1016/j.rbmo.2011.11.016.
- Evenson D., Darzynkiewicz Z., Melamed M. Relation of mammalian sperm heterogeneity to fertility // Science. 1980. № 210. Р. 1131–1133.
- Moretti E., Sutera G., Collodel G. The importance of transmission electron microscopy analysis of spermatozoa: Diagnostic applications and basic research // Syst Biol Reprod Med. 2016. № 62. Р. 171–83. doi: 10.3109/19396368.2016.1155242.
- Nijs M., Creemers E., Cox A. et al. Influence of freeze-thawing on hyaluronic acid binding of human spermatozoa // Reprod Biomed Online. 2009. № 19. Р. 202–206. doi: 10.1016/S1472-6483(10)60073-9.
- Ohta S. Molecular hydrogen as a novel antioxidant: Overview of the advantages of hydrogen for medical applications // Methods in Enzymology. 2015. Vol. 555. P. 289–317.
- Ozkavukcu S., Erdemli E., Isik A. et al. Effects of cryopreservation on sperm parameters and ultrastructural morphology of human spermatozoa // J Assist Reprod Genet. 2008. Vol. 25. Р. 403–411. doi: 10.1007/s10815-008-9232-3.
- Said T.M., Gaglani A., Agarwal A. Implication of apoptosis in sperm cryoinjury // Reprod Biomed Online. 2010. Vol. 21. Р. 456–462. doi: 10.1016/j.rbmo.2010.05.011.
- Saleh R., Agarwal A. Oxidative stress and male infertility: from research bench to clinical practice // J Androl. 2002. Vol. 23. Р. 737–752.
Дополнительные файлы
